Ni瓊脂糖凝膠說明書
Ni-Agarose Resin for 6×His-Tagged Proteins
目錄號： K0010
保 存： 20%乙醇中 2-8℃保存
組分說明
Cat.No. K0010A K0010C
Volume 10ml 100ml
產(chǎn)品簡介
該鎳柱純化系統(tǒng)對6×His-tag 蛋白具有顯著特異吸附能力，能夠高效一步純化帶有 6 個
組氨酸親和標簽的蛋白。該系統(tǒng)具有4 個 Ni2+ 螯合位點，較只有3 個螯合位點的Ni-IDA 結合
Ni2+更為牢固，有效防止純化過程中Ni2+脫落且增強對His 標簽蛋白的結合能力，提高純化效
率。較高的基團密度，大大提高了蛋白載量。該系統(tǒng)在天然或變性條件下，對來源于各種表達
系統(tǒng)（如桿狀病毒，哺乳細胞，酵母以及細菌）中的H標簽蛋白，均有很好的純化效果。本產(chǎn)
品已螯合鎳離子，可直接使用，方便，快捷。
支持物：CL-6B 瓊脂糖凝膠
載量：20-30mgHis標簽蛋白/ml 填料
粒徑：50-160μm
注意事項
1. 緩沖液中不建議使用β-巰基乙醇、DTT 和EDTA。
2. 整個純化過程中切忌凝膠脫水變干。
3. 為提高純化效率，首先確定BindingBuffer 和 ElutionBuffer 中咪唑的+*佳使用濃度。可
以使用線性或梯度濃度的咪唑（20-500mM）洗脫蛋白，并通過SDS-PAGE 或 WesternBlotting
來檢測目的蛋白的純度。
4. 請使用高純度的試劑配制緩沖液，并通過0.45µm 過濾器過濾。為避免柱子被堵塞，建議
將裂解液進行離心，或者使用 0.45µm 過濾器過濾。
5. 柱再生時，保證每步洗完后都要用足夠的去離子水沖洗至中性。
操作步驟
組裝層析柱
1. 將填料混勻后加入層析柱，室溫靜置10 分鐘，待凝膠與溶液分層后，把底部的出液口打
開，讓乙醇通過重力作用緩慢流出。
注意：（1）填料的上層是乙醇保護層，將填料和乙醇一起混勻，以每ml填料純化20-30mgHis
標簽蛋白計算，取需要的填料與乙醇的混合液加入層析柱。
（2）如果乙醇不流出，可以給柱子一個外力，例如用大拇指對柱口輕輕按壓一下，迫使乙醇流
出。
（3）本實驗都是通過重力作用使溶液流出。
2. 向裝填好的柱中加入5 倍柱體積的去離子水將乙醇沖洗干凈后，再用 10 倍柱體積的
Binding Buffer 平衡柱子，平衡結束后即可上樣。
注意：柱體積指的是填料的體積。
I 可溶性蛋白的純化（SolubleBindingBuffer和SolubleElutionBuffer配方詳見附表1）
1. 收集菌體后，每100mg菌體（濕重）加入1-5 ml細菌裂解液，超聲裂解菌體。
2. 將菌體裂解液負載上柱，流速為10倍柱體積/小時。
3. 使用15倍柱體積的Soluble Binding Buffer沖洗柱子，收集流穿峰。
4. 使用5倍柱體積的Soluble Elution Buffer洗脫，收集洗脫峰。
5. 洗脫后，依次使用3倍柱體積的Soluble Binding Buffer和5倍柱體積的去離子水洗滌柱子，
再用3倍柱體積的20%乙醇平衡（乙醇要將填料浸沒），4℃保存。II 包涵體蛋白的純化
（InclusionBodyBindingBuffer和 InclusionBodyElutionBuffer配方詳見附表2）
1. 收集菌體后，每100mg菌體（濕重）加入1-5 ml 細菌裂解液，超聲裂解菌體。
2. 離心，棄上清，將沉淀重懸于Soluble Binding Buffer中（如有需要，可進行超聲波處理，超
聲前可加入1-5mM磷酸酶抑制劑混合物）。
3. 重復操作2，直至包涵體清洗干凈（呈較潔凈的乳白色狀）。
4. 將沉淀重懸于Inclusion BodyBinding Buffer中，冰浴1小時，使包涵體溶解。
5. 10,000×g離心20分鐘，將上清以孔徑為0.45 μm的濾膜過濾。
6. 將蛋白溶液負載上柱，流速為10倍柱體積/小時。
7. 使用15倍柱體積的Inclusion BodyBinding Buffer沖洗柱子，收集流穿峰。
8. 使用5倍柱體積的Inclusion Body Elution Buffer洗脫，收集洗脫峰。
9. 洗脫后，依次使用3倍柱體積的Inclusion BodyBinding Buffer和5倍柱體積的去離子水洗滌柱
子，再用3倍柱體積的20%乙醇平衡（乙醇要將填料浸沒），4℃保存。
注意：在純化包涵體蛋白時，所有緩沖液均含有變性劑，需要降低 BindingBuffer 中的咪
唑濃度（5mM 或更低）。洗脫時，若蛋白在較高pH下洗脫失敗，可以選用低 pH 緩沖液作為洗
脫緩沖液（pH6.5，pH5.9 或 pH4.5）。 柱再生 當填料使用多次后，結合效率會有所下降（表
現(xiàn)為流速變慢或填料失去藍綠色），可以用以下方法再生，提高填料的使用壽命和蛋白質的結
合效率。
1. 使用2 倍柱體積的6M 鹽酸胍沖洗后，使用3 倍柱體積的去離子水沖洗。
2. 使用 1 倍柱體積2% SDS 沖洗。
3. 依次使用 1 倍柱體積的25%、50%、75%和5 倍柱體積100%乙醇沖洗，再依次使用 1 倍柱
體積的75%、50%、25%的乙醇沖洗。
4. 使用 1 倍柱體積的去離子水沖洗。
5. 使用 5 倍柱體積含50 mM EDTA 緩沖液（PH8.0）沖洗。
6. 使用 3 倍柱體積去離子水，3 倍柱體積20%乙醇沖洗。
7. 4°C 保存。
8. 再次使用前，需首先使用10 倍柱體積去離子水沖洗，然后使用5 個柱體積的 50 mM NiSO4
再生，3 個柱體積的Binding Buffer 平衡。
1: 蛋白分子量標準
（分子量由大到小分別為：90/66/45/27/ 14.4kDa）
2: 全菌裂解液
3: 流穿收集液
4: 洗脫收集液
1（洗脫緩沖液，含 500mM 咪唑，收集第1 個柱體積）
5: 洗脫收集液
2（洗脫緩沖液，含 500mM 咪唑，收集第 2 個柱體積）
6: 洗脫收集液
3（洗脫緩沖液，含500mM咪唑，收集第3 個柱體積）
7: 洗脫收集液
4（洗脫緩沖液，含500mM 咪唑，收集第 4 個柱體積）
附表
附表 1. 可溶性蛋白純化緩沖液配方
成分 Tris-HCl（PH7.9） 咪唑 NaCl
SolubleBindingBuffer 20mM 10mM 0.5M
SolubleElutionBuffer 20mM 500mM 0.5M
附表 2. 包涵體蛋白純化緩沖液配方
成分 Tris-HCl（PH7.9） 咪唑 NaCl 尿素/鹽酸胍
InclusionBodyBindingBuffer 20mM 5mM 0.5M 8M/6M
InclusionBodyElutionBuffer 20mM 500mM 0.5M 8M/6M
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